Group : Intracellular trafficking and lipid signaling

Research

Eucaryotic cells have different intracellular compartments presenting a define protein and lipid composition that is required to ensure their function. This composition is ensured by membrane trafficking that is the formation of a transport vesicle at a donor compartment and its trafficking to an acceptor compartment before fusion and liberation of its protein and lipid content.

 

 

 

 

We use the yeast Saccharomyces cerevisiae, primary cells from patients and mice (knock-out and knock-in) cells and tissues as models to study human genes involved in diseases et coding for proteins of the membrane trafficking.

 

Schematic view of intracellular trafficking to the primary cilia

 

Our research focuses on different steps of membrane trafficking:

-       internalization of proteins at the plasma membrane by endocytosis

-       vesicular transport from the Golgi apparatus to the vacuole/lysosome

-       protein sorting at the late endosome also termed the MVB (multivesicular body)

-       transport of proteins to the primary cilia

-       transport of mitochondrial proteins and evolution of mitochondria

 

 
Mitochondria network (in red) and vacuoles (in blue) observation by fluorescent microscopy on living yeast cells, either wild-type or mutant for the mitochondrial ATP synthase ATP9.

 

We also aim at understanding the role of protein-lipid interactions in these different steps of membrane trafficking by focusing on one class of lipids, the phosphoinositides (PPIn). Indeed, phosphatidylinositol (PtdIns) is a key lipid in trafficking, since its inositol ring can be specifically phosphorylated at multiple positions, thus producing different molecules that serve as signals for trafficking:

- PtdIns4P, mono-phosphorylation at the 4 position of the inositol ring, enriched at the Golgi

- PtdIns(4,5)P2, bis-phosphorylation at the 4 and 5 positions of the inositol ring, enriched at the plasma membrane

- PtdIns(3,4,5)P3, tris-phosphorylation at the 3, 4 and 5 positions of the inositol ring, enriched at the plasma membrane

- PtdIns3P, mono-phosphorylation at the 3 position of the inositol ring, enriched at the endosomes

- PtdIns(3,5)P2, bis-phosphorylation at the 3 and 5 positions of the inositol ring, enriched at the late endosome (MVB) and vacuolar/lysosomal membrane

- PtdIns5P, mono-phosphorylation at the 5 position of the inositol ring, enriched at the plasma membrane

 

Biochemical technics (lipids, proteins, interactions), genetics (yeast KO strains, crossing, spore dissection, mice knockin and knockout, primary cells of patients), cellular biology and imaging (fluorescence microscopy) are currently used in the laboratory.

Moreover, by using humanization of yeast cells via heterologous expression, we study human genes responsible for myopathy (MTM1, BIN1, DNM2, PYROXD1), Charcot-Marie-Tooth neuropathy (MTMR2, DNM2) or ciliopathy (VPS15). We analyze the different phenotypes resulting from the expression of either wild-type or patient mutant forms of the human gene in a simple eukaryotic unicellular organism, the yeast S. cerevisiae.

 

The aim of our studies is to better understand the cellular mechanisms leading to these complex diseases, by characterizing cellular function of protein encoded by mutated genes and this in healthy and pathological conditions.

Video of the conference given by Sylvie Friant at the Vesicular Traffic Conference with the 3 Nobels 2013 (Collège de France, Paris)

Site de la conférence

 

L’équipe utilise le modèle de la levure Saccharomyces cerevisiae, des cellules primaires de patients et des cellules et des tissus murins (modèle knock-out ou knock-in) pour étudier des protéines du trafic membranaire responsables de maladies (myopathies et ciliopathies).
 
 

 

L’équipe s’intéresse à différentes étapes du trafic intracellulaire :

-       l’internalisation des protéines à la membrane plasmique par endocytose

-       le transport vésiculaire de l’appareil de Golgi à la vacuole/lysosome

-       le tri des protéines au niveau des endosomes tardifs ou MVB (multivesicular body)

-       le transport des protéines vers le cil primaire

-       le transport de protéines mitochondriales et l’évolution des mitochondries

 

 

Nous étudions également le rôle de protéines interagissant avec ou métabolisant les lipides de type phosphoinositide. En effet, le phosphatidylinositol (PtdIns) est un lipide clef dans le trafic intracellulaire, car la modification par phosphorylation de son anneau inositol va générer différentes molécules, qui servent de signaux dans le trafic :

- PtdIns(4)P, mono-phosphorylation en position 4 de l’anneau inositol, localisation au Golgi

- PtdIns(4,5)P2, bi-phosphorylation en position 4 et 5 de l’inositol, localisation membrane plasmique

 - PtdIns(3,4,5)P3, tri-phosphorylation en position 3,4,5, de l’inositol, localisation membrane plasmique

- PtdIns(3)P, mono-phosphorylation en position 3 de l’inositol , localisation endosomale

- PtdIns(3,5)P2, bi-phosphorylation en position 3 et 5 de l’inositol, localisation endososomes multivésiculaires tardifs (MVB) et lysosome/vacuole

- PtdIns(5)P, mono-phosphorylation en position 5 de l’inositol , localisation membrane plasmique

 

Des approches de biochimie (lipides, protéines, interactions), de génétique (souches KO de levure, croisement, dissection de spore, modèle de souris Knock in et knock out, cellules primaires de patients), de biologie cellulaire et d’imagerie (microscopie à fluorescence) sont employés au laboratoire pour mettre en évidence de nouvelles fonctions cellulaires.

De plus, par des systèmes d’expression hétérologues, nous étudions des gènes humains responsables de myopathie (MTM1, BIN1, DNM2, PYROXD1, de neuropathie de type Charcot-Marie-Tooth (MTMR2, DNM2) ou de ciliopathie (VPS15 dans la levure.  Ainsi nous analysons les différences de phénotypes après expression du gène humain sauvage ou des mutants de patients dans une cellule eucaryote unicellulaire, la levure S. cerevisiae.

 

L'objectif est d'améliorer la connaissance sur les mécanismes aboutissant à ces maladies complexes en caractérisant les fonctions cellulaires des protéines codées par les gènes mutés et ceci dans un contexte sain et pathologique.

Vidéo de conférence donnée par Sylvie Friant à la Conférence Trafic Vésiculaire avec les 3 Nobels 2013 (Collège de France, Paris)

Site de la conférence

Trafficking de Ent5-GFP


Film qui montre le trafic intracellulaire de l'espine Ent5-GFP dans des cellules de levure

How to acces to the laboratory

The laboratory is at the Campus de l’Esplanade, 21 rue Descartes, Strasbourg.

Collaborators

Phosphoinositides and traffic associated to myopathies and neuropathies.

Jocelyn Laporte, IGBMC, Illkirch France

Bernard Payrastre, INSERM, Toulouse France

Ciliopathies

Hélène Dollfus LGM, Strasbourg France

Study of human proteins in yeast

Juliette Godin,, IGBMC, Illkirch, France

Study of stress response pathways (redox distress)

Sandra Cooper, The University of Sidney


Effect of pesticides (isolated and in cocktail) on cells

Mohammed KEBIECHE, University de Batna, Algérie

Rare genetic diseases in immunology and hematology

Seiamak Bahram, Strasbourg France

Genosequencing platform GENOMAX

Raphaël Carapito, Strasbourg France

Study of macromolecular complexes 

Philippe Hammann, Plateforme Protéomique Strasbourg-Esplanade

 

 




 

 

 

Funding

Agence Nationale de la Recherche, ANR

Association Française contre les Myopathies, AFM / Téléthon

Idex-Université de Strasbourg (Attractivité à Séverine Bär et bourse doctorale pour Myriam Sanjuan-Vazquez)